宁夏聚丙烯酰胺厂家 石嘴山聚丙烯酰胺、吴忠聚丙烯酰胺 固原PAM厂
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一、原理和用途

聚丙烯酰胺是一单体结构，由过硫酸胺提供并被TEMED（N, N, N′, N′－四甲基乙二胺）所稳定的自由基可以引发一个链式反应，使丙烯酰胺单体聚合成长链。同时双功能基团N,N′－亚甲基双丙烯酰胺参与聚合反应，使得链与链之间交联成凝胶。聚丙烯酰胺凝胶与琼脂糖凝胶相比，其制备和操作相对困难，需要在垂直电泳槽中进行；但聚丙烯酰胺凝胶在分离小片段DNA分子时效果很好，其分辨率极高，相差1 bp的DNA片段都能分开，而且在一个标准点样孔中可以容纳相对大量的DNA。常用的聚丙烯酰胺凝胶有两种：非变性聚丙烯酰胺凝胶和变性聚丙烯酰胺凝胶，前者用于分离和纯化双链DNA片段，后者用于分离和纯化单链DNA片段。本实验仅仅介绍非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳。该方法已广泛用于动、植物微卫星DNA（short tandem repeat，STR）的检测，以利于遗传图谱构建、数量性状基因定位、标记辅助选择、亲子鉴定及生物多样性研究等。

二、实验材料

分离纯化的核酸(DNA或RNA)。

三、溶液与缓冲液

1.   10?/FONT>TBE 缓冲液

2.   30%丙烯酰胺凝胶溶液

3.   29 g丙烯酰胺 N,N′－亚甲基双丙烯酰胺1 g 加水至100 mL，37℃溶解，置于棕色瓶中4℃保存。

4.   溴酚蓝电泳加样缓冲液。

5.   10% 过硫酸胺（APS）。

6.   TEMED（N, N, N′, N′－ 四甲基乙二胺）。

7.   DNA Marker。

8.   银染溶液的组成：

（1） 固定液：10% 乙醇。

（2） 氧化液：1% 硝酸。

（3） 染色液：0.1% AgNO3

（4） 显色液：2% NaCO3。无水碳酸钠6 g，硫代硫酸钠0.3 mg，溶于300 mL纯水中，用时加入37%甲醛0.4 mL。

（5） 终止液：4% 醋酸

四、仪器设备及耗材

电泳仪，垂直电泳槽，脱色摇床，胶梳子，微波炉，电子天平，凝胶成像仪，离心管架，吸头盒，10 mL 微量注射器，2 mL、10 mL,、100 mL移液器，10 mL、200 mL吸头，1.5 mL离心管，胶带纸等。

五、实验方法

1．聚丙烯酰胺凝胶的制备、点样与电泳

（1） 电泳装置的准备：将聚丙烯酰胺垂直电泳槽中的凝胶玻璃板充分洗净，凉干后小心装入胶框，再装在垂直电泳槽中，将螺丝拧紧，然后用1% 琼脂糖凝胶封住胶框的下边以防漏胶。

（2） 聚丙烯酰胺凝胶的制作：（8% PAGE）

30%丙烯酰胺               9.5 mL（避光4℃保存）

5?/SPAN>TBE                     6 mL

加水至                     30 mL

10% APS                   210 mL

TEMED                     18 mL

合计                        30 mL

注意：根据垂直电泳槽的大小确定聚丙烯酰胺凝胶的体积。

（3） 灌胶、点样：将胶混匀后快速倒入玻璃板夹层中，插入梳子，待胶凝固后（1 h以上），拔掉梳子，用水冲洗加样孔，然后用移液器或吸水纸吸取水分（目的是防止电泳后带不整齐），再点样，并加DNA Marker。

（4） 电泳：向胶槽中倒入电泳缓冲液（0.5?/SPAN>TBE），200 V～300 V电泳至溴酚蓝电泳加样缓冲液适当位置时（电泳3 h左右），停止电泳。

（5） 回收垂直电泳槽中的电泳缓冲液，卸下玻璃板，将其置于染色缸内，用薄钢勺或刀片小心地将上面的玻璃板从一角撬起，将上面的玻璃板平稳的拿开。有时候凝胶仍附着在下面的玻璃板上，可连同玻璃板进行染色，很快凝胶即从玻璃板上脱落。

2．聚丙烯酰胺凝胶中DNA的染色

常用的染色方法两种，一种为溴化乙锭染色法，另一种为硝酸银溶液染色法本实验介绍常规的硝酸银溶液染色法。

(1)   将染缸中的凝胶，先用蒸馏水冲洗一遍。

(2)   固定：加入10%乙醇固定10 min，弃去固定液。

(3)   氧化：加入1%硝酸，3 min，弃去氧化液。用水漂洗2次，每次10 s。

(4)   染色：加入0.1% AgNO3，放在脱色摇床上15～30 min后，将硝酸银倒掉，用水冲洗15 s。

(5)   显色：用2% NaCO3显色，待条带清晰后将溶液倒掉，然后加入4% 的乙酸溶液停止显色。回收乙酸溶液待后用。胶浸泡水中至照相。

Native-PAGE原理

非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(Native-PAGE)是在不加入SDS 疏基乙醇等变性剂的条件下，对保持活性的蛋白质进行聚丙烯酰胺凝胶电泳，常用于同工酶的鉴定和提纯。未加SDS的天然聚丙烯酰胺凝胶电泳可以使生物大分子在电泳过程中保持其天然的形状和电荷，它们的分离是依据其电泳迁移率的不同和凝胶的分子筛作用，因而可以得到较高的分辨率，尤其是在电泳分离后仍能保持蛋白质和酶等生物大分子的生物活性，对于生物大分子的鉴定有重要意义，其方法是在凝胶上进行两份相同样品的电泳，电泳后将凝胶切成两半，一半用于活性染色，对某个特定的生物大分子进行鉴定，另一半用于所有样品的染色，以分析样品中各种生物大分子的种类和含量。
 
Native-PAGE实验方法

　　非变性聚丙烯酰胺凝胶和变性sds-page电泳在操作上基本上是相同的，只是非变性聚丙烯酰胺凝胶的配制和电泳缓冲液中不能含有变性剂如SDS等。
    一般蛋白进行非变性凝胶电泳要先分清是碱性还是酸性蛋白。分离碱性蛋白时候，要利用低pH凝胶系统，分离酸性蛋白时候，要利用高pH凝胶系统。酸性蛋白通常在非变性凝胶电泳中采用的pH是8.8的缓冲系统，蛋白会带负电荷，蛋白会相阳极移动；而碱性蛋白通常电泳是在微酸性环境下进行，蛋白带正电荷，这时候需要将阴极和阳极倒置才可以电泳。分离酸性蛋白
工作液配制

1. 40%胶贮液(Acr:Bis=29：1）；

2. 4×分离胶Buf(1.5 M Tris-HCl，pH 8.8)：18.2 g Trisbase 溶于80ml 水，用浓HCl调pH 8.8，加水定容到100ml，4℃ 贮存

3. 4×堆积胶Buf(0.5 M Tris-HCl，pH 6.8)：6 g Trisbase 溶于80ml 水，用浓HCl调pH 6.8，加水定容到100ml，4℃ 贮存；

4. 10×电泳Buf（pH8.8 Tris-Gly）:??30.3 g Trisbase， 144 g 甘氨酸，加水定容到1L，4℃ 贮存；) ；

5. 2×溴酚蓝上样Buf:1.25ml pH6.8, 0.5M Tris-Cl，3.0ml甘油，0.2ml 0.5% 溴酚蓝，5.5ml dH2O； -20℃贮存；

6. 10％APS；

7. 0.25％考马斯亮蓝染色液:Coomassie blue R-250 2.5g，甲醇450ml，HAc 100ml, dH2O 450ml；

8. 考马斯亮蓝脱色液: 100ml甲醇，100冰醋酸，800ml dH2O
　　电泳胶的配制及电泳条件（上槽电极为负，下槽电极为正

1. 碱性非变性胶      17%分离胶(10 ml)       4%堆积胶(5 ml)
       2. 40%胶贮液(40%T,3.3%C）   4.25ml       0.5ml
       3. 4×分离胶Buf(1.5 M Tris-HCl，pH 8.8)       2.5ml
       4. 4×堆积胶Buf(0.5 M Tris-HCl，pH 6.8)       1.25ml
       5. 水     3.2ml" E: Q"
6. 10％APS ??35 μl
7 k( q7. TEMED    15 μl/ V& S5 A$ x0 G4 `) z
8. 10×电泳Buf（pH8.8 Tris-Gly）:100ml稀释到1L
　电泳条件 :100V恒压约20min，指示剂进入浓缩胶；改换160V恒压，当指示剂移动到胶板底部时，停止电泳，整个过程约80min。$ \, m  p6 U' ^: }6 E( f: B; L
　　染色和脱色:取出胶板于0.25％考马斯亮蓝染色液中染色约30min，倾出染色液，加入考马斯亮蓝脱色液，缓慢摇动，注意更换脱色液，直至胶板干净清晰背景。也可以用银染或者活性染色。. @; l( t5 m- F% W* f1 K
分离碱性蛋白
要用低pH凝胶系统，并使用以下缓冲液体系：' W/ m& }" h5 c% u5 v
1. 分离胶：0.06M KOH，0.376M Ac，pH4.3（7.7% T，2.67% C）；
2. 堆积胶：0.06M KOH，0.063M Ac，pH6.8（3.125% T，25% C）；
3. 电泳缓冲液：0.14M 2-丙氨酸，0.35M Ac，pH4.5
将正负电极倒置，用甲基绿（0.002%）为示踪剂+ s' c# R% }- y  Z  g
　　实验操作同分离酸性蛋白。
回收 3 ?6 ~- C2 b2 |* U8 N: W; {
        native-PAGE结束以后，采用电泳的方法进行回收，方法如下：. `' Q2 x! m! s# u, }' N
      电泳结束以后，切取部分染色，然后根据染色结果切取含有蛋白质的胶带装入处理过的透析袋中，加入适量的缓冲液，最后把透析袋放入普通的核酸电泳槽中，并在电泳槽中加入适量的缓冲液（和透析袋中的缓冲液相同），低温电泳2-3小时即可。回收蛋白所用的缓冲液一般和电泳所用的缓冲液相同。
 
 
Native-PAGE注意事项

1. 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳的过程中，蛋白质的迁移率不仅和蛋白质的等电点有关，还和蛋白质的分子量以及分子形状有关，其中蛋白质的等电点是最重要的影响因子，要根据蛋白质的等电点来选择对应的电泳缓冲系统；% P: g) p: x8 B/ C; W7 q5 c
2. 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳的过程中，要注意电压过高引起发热而导致蛋白质变性，所以最好在电泳槽外面放置冰块以降低温度；# o* x* Q2 @0 Z8 I; u6 i% Y
3. 蛋白质的分子量较大，则电泳时间可以适当延长，以使目的蛋白质有足够的迁移率和其它的蛋白质分开，反之亦然;) p* {* J0 p- ~9 x9 i+ l: a
4. 变性样品的离子强度不能太高（I<0.1mM）。调整样品的PH在4.0左右，这对于能否做好非变性样品非常重要。上样BUFFER 中没有SDS之外，加入样品后不能加热。
 
 
Native-PAGE和SDS-PAGE的比较

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　　非变性凝胶电泳，也称为天然凝胶电泳，与非变性凝胶电泳最大的区别就在于蛋白在电泳过程中和电泳后都不会变性。最主要的有以下几点：
1. 凝胶的配置中非变性凝胶不能加入SDS，而变性凝胶的有SDS。
2. 电泳载样缓冲液中非变性凝胶的不仅没有SDS，也没有巯基乙醇。
3. 在非变性凝胶中蛋白质的分离取决于它所带的电荷以及分子大小，不像SDS-PAGE电泳中蛋白质分离只与其分子量有关。0 S" s; P% ~& P: |, Z. S& ?
4. 非变性凝胶电泳中，酸性蛋白和碱性蛋白的分离是完全不同的，不像SDS-PAGE中所有蛋白都朝正极泳动。非变性凝胶电泳中碱性蛋白通常是在微酸性环境下进行，蛋白带正电荷，需要将阴极和阳极倒置才可以电泳。0 o$ p3 K* X" Z- x0 F: R
5. 因为是非变性凝胶电泳，所有的电泳时候电流不能太大，以免电泳时产生的热量太多导致蛋白变性，而且步骤都要在0-4度的条件下进行，这样才可以保持蛋白质的活性，也可以降低蛋白质的水解作用。这点跟变性电泳也不一样。% V8 l2 l( i4 q9 b4 w% Q4 P
　　所以与SDS-PAGE电泳相比，非变性凝胶大大降低了蛋白质变性发生的机率
 
 
Native-PAGE常见问题分析

0 G7 B% e7 k. p; I$ o$ Q. R4 Z
1. 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳时预电泳是怎么回事的？预电泳时要加6×DNA上样缓冲液吗？电泳1－2小时再加结合反应产物吗？
预电泳是除去凝胶中没有聚合的单体和双体和聚合引发剂，提高分辨率，不加任何物质，一般３０－６０分钟后加样电泳。; c. d6 L& c3 A% a- D" ]. V
2. 银染的步骤是什么？银染的关键因素是什么？
步骤是：
（1） 固定：10%冰乙酸30min。
（2）清洗：双蒸水冲洗凝胶2次，每次1min。1 K" N/ m% Y7 o
（3）染色：染色液（1g硝酸银，1.5mL37%甲醛，1L双蒸水。现配）染色30min。
（4） 清洗：迅速洗凝胶1次。
（5）显影：30g碳酸钠，1.5mL37%甲醛，200uL 10mg/L硫代硫酸钠。显影至清晰带纹出现。
成功银染的关键因素包括：$ S% ]0 ^' D0 d" r0 S* K1 y- z
（1）用超纯水（比如，NANOpure或Milli-Q纯化）或者是双蒸水作银染。2 T- a& G8 e- {8 c: S
（2）用提供的碳酸钠或者ACS试剂级的碳酸钠。! q+ L: w2 H; I5 S
（3）在染色后，水清洗所用时间的长短很重要，用不超过5-10秒的时间清洗胶，然后放入显色溶液中，一般在水里浸一下就好。
（4）甲醛和硫代硫酸钠（400ul/1ml）在使用前，及时加入到显色液中。
（5） 在使用前及时配染色液。/ A# \' x, Y- c* D# O3 K6 R
3. 变性PAGE的上样缓冲液配方？如何准备上样的蛋白？是将细胞用超声破碎,还是用细胞裂解液,大多细胞裂解液中均含有SDS,不知有没有用于非变性PAGE的裂解液.具有操作步骤是什么?3 i5 n2 J* f' o
　　非变性的PAGE buffer就是0.5xTBE,上样缓冲液可以用普通的loading buffer，含有Tris,溴芬兰以及甘油即可，甘油是主要的沉淀作用成分。都可以自己配。细胞超声即可，超声后离心取上清.也有配NATIVE-PAGE gel所用buffer为1*TBE,用的running buffer也是1*TBE。还有一点就是要在配gel时考虑能使蛋白多聚体稳定的因素。
4. 做了naive---PAGE没有条带，蛋白质是纯品，分子量很大，怎么回事呢？
　因为分子量很大，8%的胶浓度较合适。加样时加个marker，可以检测胶制备是否有问题。银染方法比较灵敏，如果蛋白是一种酶，且可使某种底物显色的话，可以用活性染色试试，更灵敏。

本文所提出的高技术水泥基复合材料，应用到聚丙烯酰胺。它采用的是水泥混凝土领域中的高新技术成果，囊括了水泥基材料的纳米增强技术、纤维增强水泥基复合材料技术、高延性活性细粒混凝土技术、聚合物水泥基复合材料技术等。而在水泥混凝土领域中，应用到以上部分技术的以MDF水泥、DSP材料和活性粉末混凝土（RPC）为最高端的代表。自二十世纪八十年代以来，不少发达国家的水泥与混凝土研究人员着眼于通过改变组成和采用新的成型工艺以及控制微观结构，以开发力学性能，从而有可能与铝、钢、纤维增强树脂相媲美，且具有极好耐久性的高技术水泥基复合材料（High-tech Cement BasedComposite），MDF水泥、DSP材料和活性粉末混凝土（RPC）就是这时候开发成功的高新技术材料。相对于传统水泥混凝土而言，它们都具有非常高的力学强度、致密性和抗腐蚀性能。1981年丹麦国家实验室的Bache第一次报道了DSP材料，他们采用活性高、平均粒径小于0.1m的细小硅灰作填料，加入塑化剂，制备出抗压强度达270MPa的DSP材料，并且据报道已应用于制造管道内衬、螺旋桨、螺钉、车轮、汽车车体[1-2]。RPC材料目前达到的抗压强度为170～810MPa，抗弯强度为30～140MPa，断裂能为1200～40000（J/m2），弹性模量为50～75Gpa；[3-4]适用于一些严酷环境，或者需要特长使用寿命的结构物建设，如核电站冷却塔、人行桥（钢管RPC）、输送侵蚀性介质的管道等。由此可见，这类新型材料在特殊工程需要的高强复合材料方面将有比较广阔的应用潜力，目前已有少量进入实际应用阶段。但是鉴于以上高技术材料实际应用所需要的高额成本，使它们的工业化生产至今未能实现。本文所试验的高技术水泥基材料，融合了以上诸多高新技术，通过剔除粗骨料，优化颗粒级配，同时经过改进水泥砂浆搅拌成型工艺和设备，使设备投资和生产成本可以大幅度下降[4-6]。

2.实验

2.1 原料与仪器

试验采用珠江水泥厂生产的普通42.5硅酸盐水泥，化学成分见表1，物理性能见表2。

水溶性聚丙烯酰胺（聚丙烯酰胺－polyacry lamide）。由于聚丙烯酰胺分子链上含有酰胺基团，如图（1），其显著特点就是亲水性极高，能以任何比例溶于水中，而且聚丙烯酰胺水解放出的NH3还可与水泥浆中的钙、铝离子发生化学反应，从而改善混凝土的性能。聚丙烯酰胺产品主要有3种存在形式：水溶液胶体、胶乳及干粉状。干粉状聚丙烯酰胺只要密封不受潮，可稳定储存两年，与其他聚合物产品相比价

格便宜[3]，且聚丙烯酰胺干粉可直接与水泥和骨料一起干拌后加水拌和，使用方便，不需要特殊的设备。因此本文选用聚丙烯酰胺干粉作为混凝土的改性材料。硅灰（SiO2≥95%）为南韩进口产品。

实验所用仪器设备：

红外光谱分析仪IR（采用美国尼高力公司生产的Nexus Por Euro傅立叶红外光谱仪）；环境扫描电镜ESEM（采用德国里奥电镜公司生产的环境扫描电镜）；X射线衍射仪XRD（采用荷兰PANalytical生产的X'Pert Pro X射线衍射仪）；三点抗弯试验机（采用DKZ-5000的抗折试验机）；300t抗压实验机（采用济南试验机厂生产的YE-5000A试验机）。

2.2 试样的制备与测试

试样规格为40mm×30mm×160mm的板状，控制好试样制备过程中各相关参数。称取400g水泥，按照水灰比0.18～0.22确定加水量，按照不同的聚胶比P/B添加聚合物，采取尽可能大的剪切力，先充分干混，以使物料均匀为目的。待搅拌结束，将物料放入磨具中，用大型混凝土压力机进行加压操作，在固定压力值15MPa下保压5分钟，以防止受压的试块弹性恢复引起拉伸裂缝。常温养护24h结束后，脱模，将试样放置于60℃～80℃快速养护箱，养护48h后，取出常温晾干后，采用陶瓷三点万能实验机进行抗弯测试。

3.实验结果及讨论

3.1 实验结果

我们对此种复合材料的最佳水灰比范围以及添加聚丙烯酰胺后的最佳聚胶比范围做了大量的对比性实验，从W/C为0.10~0.30，P/B为1.0％～4.0％都进行了实验对比，然后根据聚合物聚丙烯酰胺的最佳掺量范围进行其他因素的配比调整。由图2和图3可以看出，复合材料的抗压/抗弯强度曲线虽然存在着比较大的波动，但明显存在着一个最佳选取范围，低于或超出这个范围，强度都出现明显的回落。

总体而言，水灰比在0.18~0.22之间时，复合材料能够获得最高的抗压/抗弯强度[6]。由图4和图5可以看出，复合材料的聚合物聚丙烯酰胺掺量同样存在一个最大值点，虽然抗压和抗折的最大值出并不对应着完全相同的P/B，但最大值基本对应着3.0％的P/B，

此处附近得到的抗压强度最大值为146.2MPa，抗折强度则到了33.1MPa。通过数值我们可以得到以下结论：当W/C为0.21，P/B为3.0％时，试体抗弯强度达到33.1MPa，抗压强度比未添加聚丙烯酰胺时的最大值211.2MPa有所下降，但整体压、折强度值却趋于稳定。这就充分说明，当水胶比介于0.18~0.22之间，聚丙烯酰胺掺量在3.0％附近时，聚合物与水泥基材料各自的性能都得到了很好的发挥。

3.2微观分析及机理研究

3.2.1聚丙烯酰胺掺入的SEM分析

图（6）是掺入聚丙烯酰胺改性的水泥基复合材料界面过渡区的SEM照片。

由图可以看出，聚丙烯酰胺改性的水化产物显微结构以凝胶状物质为主体，还有少量呈点分布的柱状、微杆状等形态存在的钙矾石（AFt），基本上看不到氢氧化钙CH的存在，其主要组成还是水化硅酸钙C-S-H、钙矾石AFt，此时基本上消除了集料-水泥石界面过渡区中的薄弱环节，裂缝和孔洞基本看不到。图（7）是未掺入聚丙烯酰胺改性的水泥基复合材料界面过渡区的SEM照片，可以很明显的看出一定量层状Ca(OH)2，存在较大孔隙，结构明显疏松。这充分说明，掺入聚合物聚丙烯酰胺之后，水化产物的形态在一定程度上被改善了，整个结构趋于致密化，孔隙数量大幅度减少并且变得小而均匀，六方板状的氢氧化钙CH结晶完善度受到了极大抑制，基本上看不到完整六方板状的结晶产物[7-8]。可见聚丙烯酰胺掺入后，可改善水泥石-集料界面区Ca(OH)2结晶的数量、尺寸及空间分布排列状况，从而导致界面粘结强度大幅提高[9]。

3.2.2XRD物相分析

通过XRD衍射测试如图8，对各峰值进行分析后，我们可以得到主要的化学组成为：α-SiO2，CaCO3，Ca(OH)2和Ca3SiO5。我们可以看出，α-SiO2具有最强的衍射峰，所占的衍射峰的数目也最多，这极有可能时因为大量细砂和石英粉加入的缘故。通过XRD衍射测试如图8，对各峰值进行分析后，我们可以得到主要的化学组成为：α-SiO2，CaCO3，Ca(OH)2和Ca3SiO5。我们可以看出，α-SiO2具有最强的衍射峰，所占的衍射峰的数目也最多，这极有可能时因为大量细砂和石英粉加入的缘故。

通过XRD衍射测试如图9，对各峰值进行分析后，我们依然可以得到主要的化学组成为：α-SiO2，CaCO3，Ca(OH)2和Ca3SiO5。但是跟加入聚合物后的图8相比，一个显著的区别就是：未加聚合物的图9中Ca(OH)2的衍射峰强，而图8中却明显下降。这表明在聚合物聚丙烯酰胺加入之后，它与水泥的水化产物发生了物理和化学作用，消耗掉了一部分Ca(OH)2，所以使得其含量减少或者结晶性变弱。通过XRD衍射测试如图9，对各峰值进行分析后，我们依然可以得到主要的化学组成为：α-SiO2，CaCO3，Ca(OH)2和Ca3SiO5。但是跟加入聚合物后的图8相比，一个显著的区别就是：未加聚合物的图9中Ca(OH)2的衍射峰强，而图8中却明显下降。这表明在聚合物聚丙烯酰胺加入之后，它与水泥的水化产物发生了物理和化学作用，消耗掉了一部分Ca(OH)2，所以使得其含量减少或者结晶性变弱。

4. 结论

根据试验过程和试验结果分析，可以得到以下结论：根据试验过程和试验结果分析，可以得到以下结论：

(1) 就抗压/抗弯强度而言，高技术水泥基复合材料存在着一个最佳水灰比范围和聚合物掺量点，在本试验中，水灰比在0.18~0.22之间，聚丙烯酰胺在3.0％左右时，复合材料能够获得最高的抗压/抗弯强度。(1) 就抗压/抗弯强度而言，高技术水泥基复合材料存在着一个最佳水灰比范围和聚合物掺量点，在本试验中，水灰比在0.18~0.22之间，聚丙烯酰胺在3.0％左右时，复合材料能够获得最高的抗压/抗弯强度。

(2) SEM分析表明，掺入聚丙烯酰胺后，水泥石-集料界面区的Ca(OH)2结晶无论在数量、尺寸及空间分布排列状况都得到了改善，从而使抗压/抗弯强度大幅提高。(2) SEM分析表明，掺入聚丙烯酰胺后，水泥石-集料界面区的Ca(OH)2结晶无论在数量、尺寸及空间分布排列状况都得到了改善，从而使抗压/抗弯强度大幅提高。

(3) 红外光谱分析和XRD物相分析一致(3) 红外光谱分析和XRD物相分析一致地揭示了，聚丙烯酰胺改性水泥基复合材料的水化首先是水泥熟料矿物水化，同时聚丙烯酰胺的酰胺基水解转化为含有羧基的聚合物，然后这些聚合物消耗体系中的Ca(OH)2，从而有效地减少了CH晶体在界面区的富集，改善了集料与水泥浆体的界面区结构，极大的提高了界面区的密实度。

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